2016版药典微生物检验的学习与实施
时间：
如英2
生物学习方法
你知道什么是微生物检测吗?下面是由学习啦小编分享的2016版药典微生物检验的学习与实施，希望对你有用。
2016版药典微生物检验的学习与实施：
宏观变化一：全面与国际接轨
以无菌检查法为例
从上述无菌检查法的比较中我们不难看出，新药典参考EP7.0、USP35、JPXV标准，修订中国药典的微生物标准;参考欧美日药典标准修订菌数标准表达方式;以需氧菌总数替代细菌数、耐胆盐的格兰阴性菌替代大肠菌群等等，并增加新的概念：如含菌量较低的供试品细菌总数测定使用最大可能数法、分散均匀并非一定要溶解等等，同时新药典引入的偏差调查概念和内容更具体等等方面说明，微生物检验技术与国际标准要求接轨已成定势。
微观变化二：实验环境的修订
2015年版药典中对无菌检查环境洁净度规定：无菌检查应在B 级背景下的A 级单向流洁净区域或D级背景下的隔离器中进行。限度检查要求在受控洁净环境下的局部不低于B级单向流空气区域进行。
环境的提升，除了设备硬件的要求提高，还有验证和维持环境要求的提高。洁净或无菌室应配备独立的空气机组或空气净化系统，以满足相应的检验要求，包括温度和湿度的控制，压力、照度和噪声等都应符合工作要求。空气过滤系统应定期维护和更换, 并保存相关记录。
微生物实验室应划分成相应的洁净区域和活菌操作区域，同时应根据实验目的，在时间或空间上有效分隔不相容的实验活动，将交叉污染的风险降低到最低。活菌操作区应该配备生物安全柜，以避免危害性的生物因子对实验人员和实验环境造成的危害。
实验室环境监测要求提高，增加人员进出表面微生物的监测，以降低人员操作时带来的风险。对微生物室使用的消毒剂和清洁剂进行验证，从而有效控制微生物，保证无菌环境达到要求。
微生物实验室需要加强人员在环境监测时的操作规范，保证环境监测数据的准确性。而且实验人员应经过实验室生物安全方面的培训，保证自身安全，防止微生物在实验室内部污染。
微观变化三：培养系统的修订
例如下表：
计数用培养基的修订
控制菌所用培养基的修订
微生物限度方法适用性试验中的修订
从上述表格比较不难看出：培养基系统的修订提升了培养基的灵敏度及微生物的检出率，对培养基的质量控制和人员的检验操作要求均提高。实验室应对培养基的适用性、灭菌方法、菌株纯度和活性(包括性能)、试剂的质量等进行监控。用于环境监控的培养基须特别防护，以防止外来的污染物带到环境中及避免出现假阳性结果。试验菌株的质量保证和基本操作技术均有待提高，包括菌悬液的配制、菌种的鉴定、表型描述、革兰染色、重要生化试验等。
微观变化四：药典整合后编制的新通则
2015版《中国药典》通则9201—药品微生物检验替代方法验证指导原则
2015版《中国药典》通则9203——药品微生物实验室质量管理指导原则
2015版《中国药典》通则9205——药品洁净实验室微生物监测和控制指导原则
2015版《中国药典》通则9206——无菌检查用隔离系统验证指导原则
与2016版药典微生物检验的学习与实施有关的阅读：
控制菌检查法
控制菌检查法系用于在规定的试验条件下，检查供试品中是否存在特定的微生物。
当本法用于检查非无菌制剂及其原、辅料等是否符合相应的微生物限度标准时，应按下列规定进行检验，包括样品取样量和结果判断等。
供试品检出控制菌或其他致病菌时,按一次检出结果为准,不再复试。
供试液制备及实验环境要求同“非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法”。
如果供试品具有抗菌活性，应尽可能去除或中和。供试品检查时, 若使用了中和剂或灭活剂，应确认有效性及对微生物无毒性。
供试液制备时如果使用了表面活性剂，应确认其对微生物无毒性以及与所使用中和剂或灭活剂的相容性。
培养基适用性检查和控制菌检查方法适用性试验
供试品控制菌检查中所使用的培养基应进行适用性检查。
供试品的控制菌检查方法应进行方法适用性试验，以确认所采用的方法适合于该产品的控制菌检查。
若检验程序或产品发生变化可能影响检验结果时，控制菌检查方法应重新进行适用性试验。
菌种及菌液制备
菌种 试验用菌株的传代次数不得超过5 代(从菌种保藏中心获得的干燥菌种为第0 代)，并采用适宜的菌种保藏技术进行保存，以保证试验菌株的生物学特性。
金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)〔CMCC(B)26 003〕
铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa)〔CMCC(B)10 104〕
大肠埃希菌(Escherichia coli)〔CMCC(B)44 102〕
乙型副伤寒沙门菌(Salmonella paratyphi B)〔CMCC(B)50 094〕
白色念珠菌(Candida albicans)〔CMCC(F)98 001〕
生孢梭菌(Clostridium sporogenes)〔CMCC(B)64 941〕
菌液制备 将金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌、大肠埃希菌、沙门菌分别接种于胰酪大豆胨液体培养基中或在胰酪大豆胨琼脂培养基上，30～35℃培养18～24 小时;将白色念珠菌接种于沙氏葡萄糖琼脂培养基上或沙氏葡萄糖液体培养基中，20～25℃培养2～3 天;将生孢梭菌接种于梭菌增菌培养基中置厌氧条件下30～35℃培养24～48 小时或接种于硫乙醇酸盐流体培养基中30～35℃培养18～24 小时。上述培养物用pH7.0 无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或0.9%无菌氯化钠溶液制成适宜浓度的菌悬液。
菌液制备后若在室温下放置，应在2 小时内使用;若保存在2～8℃，可在24 小时内使用。生孢梭菌孢子悬液可替代新鲜的菌悬液，孢子悬液可保存在2～8℃，在验证过的贮存期内使用。
阴性对照
为确认试验条件是否符合要求，应进行阴性对照试验， 阴性对照试验应无菌生长。如阴性对照有菌生长，应进行偏差调查。
培养基适用性检查
控制菌检查用的成品培养基、由脱水培养基或按处方配制的培养基均应进行培养基的适用性检查。
控制菌检查用培养基的适用性检查项目包括促生长能力、抑制能力及指示特性的检查。各培养基的检查项目及所用的菌株见表1。
表1 控制菌检查用培养基的促生长能力、抑制能力和指示特性
液体培养基促生长能力检查 分别接种不大于100cfu 的试验菌(见表1)于被检培养基和对照培养基中，在相应控制菌检查规定的培养温度及不大于规定的最短培养时间下培养，与对照培养基管比较，被检培养基管试验菌应生长良好。
固体培养基促生长能力检查 用涂布法分别接种不大于100cfu 的试验菌(见表1)于被检培养基和对照培养基平板上，在相应控制菌检查规定的培养温度及不大于规定的最短培养时间下培养，被检培养基与对照培养基上生长的菌落大小、形态特征应一致。
培养基抑制能力检查 接种不少于100cfu 的试验菌(见表1)于被检培养基和对照培养基中，在相应控制菌检查规定的培养温度及不小于规定的最长培养时间下培养，试验菌应不得生长。
培养基指示特性检查 用涂布法分别接种不大于100cfu 的试验菌(见表1)于被检培养基和对照培养基平板上，在相应控制菌检查规定的培养温度及不大于规定的最短培养时间下培养，被检培养基上试验菌生长的菌落大小、形态特征、指示剂反应情况等应与对照培养基一致。
控制菌检查方法适用性试验
供试液制备 按下列“供试品检查”中的规定制备供试液。
试验菌 根据各品种项下微生物限度标准中规定检查的控制菌选择相应试验菌株，确认耐胆盐革兰阴性菌检查方法时,采用大肠埃希菌和铜绿假单胞菌为试验菌。
适用性试验 按控制菌检查法取规定量供试液及不大于100cfu 的试验菌接入规定的培养基中;采用薄膜过滤法时,取规定量供试液,过滤,冲洗,在最后一次冲洗液中加入试验菌,过滤后,注入规定的培养基或取出滤膜接入规定的培养基中。依相应的控制菌检查方法，在规定的温度和最短时间下培养，应能检出所加
试验菌相应的反应特征。
结果判断 上述试验若检出试验菌，按此供试液制备法和控制菌检查方法进行供试品检查;若未检出试验菌，应消除供试品的抑菌活性[见非无菌产品微生物检查：微生物计数法中的“抗菌活性的去除或灭活”]，并重新进行方法适用性试验。
如果经过试验确证供试品对试验菌的抗菌作用无法消除，可认为受抑制的微生物不易存在于该供试品中，选择抑菌成份消除相对彻底的方法进行供试品的检查。
供试品检查
供试品的控制菌检查应按经方法适用性试验确认的方法进行。
阳性对照试验 阳性对照试验方法同供试品的控制菌检查,对照菌的加量应不大于100cfu。阳性对照试验应检出相应的控制菌。
阴性对照试验 以稀释剂代替供试液照相应控制菌检查法检查，阴性对照试验应无菌生长。如果阴性对照有菌生长，应进行偏差调查。
耐胆盐革兰阴性菌(Bile-Tolerant Gram-Negative Bacteria)
供试液制备和预培养 取供试品，用胰酪大豆胨液体培养基作为稀释剂照“非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法”制成1：10 供试液，混匀，在20～25℃培养，培养时间应使供试品中的细菌充分恢复但不增殖(约2小时)。
定性试验
除另有规定外，取相当于1g 或1mL 供试品的上述预培养物接种至适宜体积(经方法适用性试验确定)肠道菌增菌液体培养基中，30～35℃培养24～48 小时后，划线接种于紫红胆盐葡萄糖琼脂培养基平板上，30～35℃培养18～24 小时。如果平板上无菌落生长，判供试品未检出耐胆盐革兰阴性菌。
定量试验
选择和分离培养 取相当于0.1g、0.01g 和0.001g(或0.1mL、0.01mL 和0.001mL)供试品的预培养物或其稀释液分别接种至适宜体积(经方法适用性试验确定)肠道菌增菌液体培养基中，30～35℃培养24～48 小时。上述每一培养物分别划线接种于紫红胆盐葡萄糖琼脂培养基平板上，30～35℃培养18～24 小时。
结果判断 若紫红胆盐葡萄糖琼脂培养基平板上有菌落生长，则对应培养管为阳性，否则为阴性。根据各培养管检查结果，从表2 查1g 或1ml 供试品中含有耐胆盐革兰阴性菌的可能菌数。
表2 耐胆盐革兰阴性菌的可能菌数(N)
注：⑴ +代表紫红胆盐葡萄糖琼脂平板上有菌落生长;-代表紫红胆盐葡萄糖琼脂平板上无菌落生长。
⑵ 若供试品量减少10 倍(如0.01g 或0.01ml，0.001g 或0.001ml，0.0001g 或0.0001ml)，则每1g(或1mL)供试品中可能的菌数(N)应相应增加10 倍。
大肠埃希菌(Escherichia coli)
供试液制备和增菌培养 取供试品，照“非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法”制成1：10 供试液。取相当于1g 或1mL 供试品的供试液，接种至适宜体积(经方法适用性试验确定)的胰酪大豆胨液体培养基中，混匀，30～35℃培养18～24 小时。
选择和分离培养 取上述培养物1mL 接种至100mL 麦康凯液体培养基中，42～44℃培养24～48 小时。取麦康凯液体培养物划线接种于麦康凯琼脂培养基平板上，30～35℃培养18～72 小时。
结果判断 若麦康凯琼脂培养基平板上有菌落生长，应进行分离、纯化及适宜的鉴定试验, 确证是否为大肠埃希菌;若麦康凯琼脂培养基平板上没有菌落生长，或虽有菌落生长但鉴定结果为阴性，判供试品未检出大肠埃希菌。
沙门菌(Salmonella)
供试液制备和增菌培养 取10g 或10mL 供试品直接或处理后接种至适宜体积(经方法适用性试验确定)的胰酪大豆胨液体培养基中，混匀，30～35℃培养18～24 小时。
选择和分离培养 取上述培养物0.1mL 接种至10mL RV 沙门增菌液体培养基中，30～35℃培养18～24 小时。取少量RV 沙门菌增菌液体培养物划线接种于木糖赖氨酸脱氧胆酸盐琼脂培养基平板上，30～35℃培养18～48 小时。
沙门菌在木糖赖氨酸脱氧胆酸盐琼脂培养基平板上生长良好，菌落为淡红色或无色、透明或半透明、中心有或无黑色。用接种针挑选疑似菌落于三糖铁琼脂培养基高层斜面上进行斜面和高层穿刺接种，培养18～24 小时，或采用其它适宜方法进一步鉴定。
结果判断 若木糖赖氨酸脱氧胆酸盐琼脂培养基平板上有疑似菌落生长，且三糖铁琼脂培养基的斜面为红色、底层为黄色，或斜面黄色、底层黄色或黑色，应进一步进行适宜的鉴定试验, 确证是否为沙门菌。如果平板上没有菌落生长，或虽有菌落生长但鉴定结果为阴性，或三糖铁琼脂培养基的斜面未见红色、底层未见黄色;或斜面黄色、底层未见黄色或黑色，判供试品未检出沙门菌。
铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa)
供试液制备和增菌培养 取供试品，照“非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法”制成1：10 供试液。取相当于1g 或1mL 供试品的供试液，接种至适宜体积(经方法适用性试验确定的)的胰酪大豆胨液体培养基中，混匀。30～35℃培养18～24 小时。
选择和分离培养 取上述培养物划线接种于溴化十六烷基三甲铵琼脂培养基平板上，30～35℃培养18～72 小时。取上述平板上生长的菌落进行氧化酶试验，或采用其它适宜方法进一步鉴定。
氧化酶试验 将洁净滤纸片置于平皿内,用无菌玻棒取上述平板上生长的菌落涂于滤纸片上，滴加新配制的1%二盐酸N, N -二甲基对苯二胺试液，在30 秒内若培养物呈粉红色并逐渐变为紫红色为氧化酶试验阳性,否则为阴性。
结果判断 若溴化十六烷基三甲铵琼脂培养基平板上有菌落生长，且氧化酶试验阳性，应进一步进行适宜的鉴定试验, 确证是否为铜绿假单胞菌。如果平板上没有菌落生长，或虽有菌落生长但鉴定结果为阴性，或氧化酶试验阴性，判供试品未检出铜绿假单胞菌。
金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)
供试液制备和增菌培养 取供试品，照“非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法”制成1：10 供试液。取相当于1g 或1mL 供试品的供试液，接种至适宜体积(经方法适用性试验确定)的胰酪大豆胨液体培养基中，混匀。30～35℃培养18～24 小时。
选择和分离培养 取上述培养物划线接种于甘露醇氯化钠琼脂培养基平板上，30～35℃培养18～72 小时。
结果判断 若甘露醇氯化钠琼脂培养基平板上有黄色菌落或外周有黄色环的白色菌落生长，应进行分离、纯化及适宜的鉴定试验, 确证是否为金黄色葡萄球菌;若平板上没有与上述形态特征相符或疑似的菌落生长，或虽有相符或疑似的菌落生长但鉴定结果为阴性，判供试品未检出金黄色葡萄球菌。
梭菌(Clostridia)
供试液制备和热处理 取供试品，照“非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法”制成1：10 供试液。取相当于1g 或1mL 供试品的供试液2 份，其中1 份置80℃保温10 分钟后迅速冷却。
增菌、选择和分离培养 将上述2 份供试液分别接种至适宜体积(经方法适用性试验确定)的梭菌增菌培养基中，置厌氧条件下30～35℃培养48 小时。取上述每一培养物少量，分别涂抹接种于哥伦比亚琼脂培养基平板上，置厌氧条件下30～35℃培养48～72 小时。
过氧化氢酶试验 取上述平板上生长的菌落，置洁净玻片上，滴加3%过氧化氢试液，若菌落表面有气泡产生,为过氧化氢酶试验阳性,否则为阴性。
结果判断 若哥伦比亚琼脂培养基平板上有厌氧杆菌生长(有或无芽孢)，且过氧化氢酶反应阴性的，应进一步进行适宜的鉴定试验, 确证是否为梭菌;如果哥伦比亚琼脂培养基平板上没有厌氧杆菌生长，或虽有相符或疑似的菌落生长但鉴定结果为阴性，或过氧化氢酶反应阳性，判供试品未检出梭菌。
白色念珠菌(Candida albicans)
供试液制备和增菌培养 取供试品，照“非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法”制成1：10 供试液。取相当于1g 或1mL 供试品的供试液，接种至适宜体积(经方法适用性试验确定)的沙氏葡萄糖液体培养基中，混匀，30～35℃培养3～5 天。
选择和分离 取上述预培养物划线接种于沙氏葡萄糖琼脂培养基平板上，30～35℃培养24～48 小时。
白色念珠菌在沙氏葡萄糖琼脂培养基上生长的菌落呈乳白色，偶见淡黄色,表面光滑有浓酵母气味,培养时间稍久则菌落增大，颜色变深、质地变硬或有皱褶。挑取疑似菌落接种至念珠菌显色培养基平板上，培养24～48 小时(必要时延长至72 小时)，或采用其它适宜方法进一步鉴定。
结果判断 若沙氏葡萄糖琼脂培养基平板上有疑似菌落生长，且疑似菌在念珠菌显色培养基平板上生长的菌落呈阳性反应，应进一步进行适宜的鉴定试验,确证是否为白色念珠菌;若沙氏葡萄糖琼脂培养基平板上没有菌落生长，或虽有菌落生长但鉴定结果为阴性，或疑似菌在念珠菌显色培养基平板上生长的菌落呈阴性反应，判供试品未检出白色念珠菌。
稀释液
稀释液配制后,应采用验证合格的灭菌程序灭菌。
1. pH7.0 无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液 取磷酸二氢钾3.56g，无水磷酸氢二钠5.77g，氯化钠4.30g，蛋白胨1.00g，加水1000ml，微温溶解，滤清，分装，灭菌。
2. pH6.8 无菌磷酸盐缓冲液、pH7.2 无菌磷酸盐缓冲液 、pH7.6 无菌磷酸盐缓冲液按缓冲液 照缓冲液配制后,过滤,分装,灭菌。
如需要,可在上述稀释液灭菌前或灭菌后加入表面活性剂或中和剂等。
3.0.9%无菌氯化钠溶液 取氯化钠9.0g,加水溶解使成1000ml，过滤，分装，灭菌。
培养基及其制备方法
培养基可按以下处方制备,也可使用按该处方生产的符合要求的脱水培养基。配制后,应按验证过的高压灭菌程序灭菌。
1.胰酪大豆胨液体培养基(TSB)
胰酪胨 17.0g 氯化钠 5.0g
大豆木瓜蛋白酶水解物 3.0g 磷酸氢二钾 2.5g
葡萄糖/无水葡萄糖2.5g/2.3g 水 1000ml
除葡萄糖外，取上述成分，混合，微温溶解，滤过，调节pH 使灭菌后在25℃的pH 值为7.3±0.2，加入葡萄糖，分装，灭菌。
2. 胰酪大豆胨琼脂培养基(TSA)
胰酪胨 15.0g 琼脂 15.0g
大豆木瓜蛋白酶水解物 5.0g 水 1000ml
氯化钠 5.0g
除琼脂外，取上述成分，混合，微温溶解，调节pH 使灭菌后在25℃的pH 值为7.3±0.2，加入琼脂，加热熔化后，摇匀，分装，灭菌。
3. 沙氏葡萄糖液体培养基(SDB)
动物组织胃蛋白酶水解物和胰酪胨等量混合物 10.0g
葡萄糖 20.0g 水 1000ml
除葡萄糖外，取上述成分，混合，微温溶解，调节pH 使灭菌后在25℃的pH 值为5.6±0.2，加入葡萄糖，摇匀，分装，灭菌。
4.沙氏葡萄糖琼脂培养基(SDA)
动物组织胃蛋白酶水解物和胰酪胨等量混合物 10.0g
葡萄糖 40.0g 水 1000ml
琼脂 15.0g
除葡萄糖、琼脂外，取上述成分，混合，微温溶解，调节pH 使灭菌后在25℃的pH 值为5.6±0.2，加入琼脂，加热熔化后，再加入葡萄糖，摇匀，分装，灭菌。
如使用含抗生素的沙氏葡萄糖琼脂培养基，应确认培养基中所加的抗生素量不影响供试品中霉菌和酵母菌的生长。
5.马铃薯葡萄糖琼脂培养基(PDA)
马铃薯(去皮) 200g 琼脂 14.0g
葡萄糖 20.0g 水 1000ml
取马铃薯，切成小块，加水1000mL，煮沸20-30min，用6-8 层纱布过滤，取滤液补水至1000ml，调节pH 使灭菌后在25℃的pH 值为5.6±0.2，加入琼脂,加热溶化后, 再加入葡萄糖，摇匀，分装，灭菌。
6.玫瑰红钠琼脂培养基
胨 5.0g 玫瑰红钠 0.0133g
葡萄糖 10.0g 琼脂 14.0g
磷酸二氢钾 1.0g 水 1000ml
硫酸镁 0.5g
除葡萄糖、玫瑰红钠外,取上述成分,混合,微温溶解，加入葡萄糖、玫瑰红钠,摇匀，分装，灭菌。
7.硫乙醇酸盐流体培养基
胰酪胨 15.0g 氯化钠 2.5g
酵母浸出粉 5.0g 琼脂 0.75g
无水葡萄糖 5.0g 水 1000 ml
L-胱氨酸 0.5g
新配制的0.1%刃天青溶液 1.0 ml
硫乙醇酸钠(或硫乙醇酸) 0.5g(0.3 ml)
除葡萄糖和刃天青溶液外,取上述成分,混合,微温溶解，调节pH为弱碱性，煮沸，滤清，加入葡萄糖和刃天青溶液,摇匀，调节pH，使灭菌后在25℃的pH 值为7.1±0.2。分装至适宜的容器中，其装量与容器高度的比例应符合培养结束后培养基氧化层(粉红色)不超过培养基深度的1/2。灭菌。在供试品接种前，培养基氧化层的高度不得超过培养基深度的1/5，否则，须经100℃水浴加热至粉红色消失(不超过20分钟)，迅速冷却，只限加热一次，并防止被污染。
8.肠道菌增菌液体培养基
明胶胰酶水解物 10.0g 二水合磷酸氢二钠 8.0g
牛胆盐 20.0g 亮绿 15mg
葡萄糖 5.0g 水 1000ml
磷酸二氢钾 2.0g
除葡萄糖、亮绿外,取上述成分,混合,微温溶解，调节pH 使加热后在25℃的pH 值为7.2±0.2，加入葡萄糖、亮绿，加热至100℃ 30 分钟，立即冷却。
9.紫红胆盐葡萄糖琼脂培养基
酵母浸出粉 3.0g 中性红 30mg
明胶胰酶水解物 7.0g 结晶紫 2mg
脱氧胆酸钠 1.5g 琼脂 15.0g
葡萄糖 10.0g 水 1000ml
氯化钠 5.0g
除葡萄糖、中性红、结晶紫、琼脂外,取上述成分,混合,微温溶解，调节pH使加热后在25℃的pH 值为7.4±0.2。加入葡萄糖、中性红、结晶紫、琼脂，加热煮沸(不能在高压灭菌器中加热)。
10.麦康凯液体培养基
明胶胰酶水解物 20.0g 溴甲酚紫 10mg
乳糖 10.0g 水 1000ml
牛胆盐 5.0g
除乳糖、溴甲酚紫外，取上述成分，混合，微温溶解，调节pH 使灭菌后在25℃的pH 值为7.3±0.2，加入乳糖、溴甲酚紫，分装，灭菌。
11.麦康凯琼脂培养基
明胶胰酶水解物 17.0g 中性红 30.0mg
胨 3.0g 结晶紫 1mg
乳糖 10.0g 琼脂 13.5g
脱氧胆酸钠 1.5g 水 1000ml
氯化钠 5.0g
除乳糖、中性红、结晶紫、琼脂外，取上述成分，混合，微温溶解，调节pH使灭菌后在25℃的pH 值为7.1±0.2，加入乳糖、中性红、结晶紫、琼脂，加热煮沸1 分钟，并不断振摇，分装，灭菌。
12.RV 沙门菌增菌液体培养基
大豆胨 4.5g 六水合氯化镁 29.0g
氯化钠 8.0g 孔雀绿 36mg
磷酸氢二钾 0.4g 水 1000ml
磷酸二氢钾 0.6g
除孔雀绿外，取上述成分，混合，微温溶解，调节pH 使灭菌后在25℃的pH值为5.2±0.2。加入孔雀绿，分装，灭菌,灭菌温度不能超过115℃。
13.木糖赖氨酸脱氧胆酸盐琼脂培养基
酵母浸出粉 3.0g 氯化钠 5.0g
L-赖氨酸 5.0g 硫代硫酸钠 6.8g
木糖 3.5g 枸橼酸铁铵 0.8g
乳糖 7.5g 酚红 80mg
蔗糖 7.5g 琼脂 13.5g
脱氧胆酸钠 2.5g 水 1000ml
除三种糖、酚红、琼脂外，取上述成分，混合，微温溶解,调节pH 使加热后在25℃的pH 值为7.4±0.2，加入三种糖、酚红、琼脂，加热至沸腾，冷至50℃倾注平皿(不能在高压灭菌器中加热)。
14.三糖铁琼脂培养基(TSI)
胨 20.0g 硫酸亚铁 0.2g
牛肉浸出粉 5.0g 硫代硫酸钠 0.2g
乳糖 10.0g 0.2%酚磺酞指示液 12.5ml
蔗糖 10.0g 琼脂 12.0g
葡萄糖 1.0g 水 1000ml
氯化钠 5.0g
除三种糖、0.2%酚磺酞指示液、琼脂外，取上述成分，混合，微温溶解, 调节pH 使灭菌后在25℃的pH 值为7.3±0.1，加入琼脂，加热溶化后，再加入其余各成分，摇匀，分装，灭菌，制成高底层(2～3cm)短斜面。
15.溴化十六烷基三甲铵琼脂培养基
明胶胰酶水解物 20.0g 甘油 10ml
氯化镁 1.4g 溴化十六烷基三甲铵 0.3g
硫酸钾 10.0g 琼脂 13.6g
水 1000ml
除琼脂外，取上述成分，混合，微温溶解，调节pH 使灭菌后在25℃的pH 值为7.4±0.2，加入琼脂，加热煮沸1 分钟，分装，灭菌。
16.甘露醇氯化钠琼脂培养基
胰酪胨 5.0g 氯化钠 75.0g
动物组织胃蛋白酶水解物 5.0g 酚红 25mg
牛肉浸出粉 1.0g 琼脂 15.0g
D-甘露醇 10.0g 水 1000ml
除甘露醇、酚红、琼脂外，取上述成分，混合，微温溶解，调节pH 使灭菌后在25℃的pH 值为7.4±0.2，加热并振摇，加入甘露醇、酚红、琼脂，煮沸1分钟，分装，灭菌。
17.梭菌增菌培养基
胨 10.0g 盐酸半胱氨酸 0.5g
牛肉浸出粉 10.0g 乙酸钠 3.0g
酵母浸出粉 3.0g 氯化钠 5.0g
可溶性淀粉 1.0g 琼脂 0.5g
葡萄糖 5.0g 水 1000ml
除葡萄糖外，取上述成分，混合，加热煮沸使溶解，并不断搅拌。如需要，调节pH 使灭菌后在25℃的pH 值为6.8±0.2。加入葡萄糖，混匀，分装，灭菌。
18.哥伦比亚琼脂培养基
胰酪胨 10.0g 玉米淀粉 1.0g
肉胃蛋白酶水解物 5.0g 氯化钠 5.0g
心胰酶水解物 3.0g 琼脂 10.0～15.0g(依凝固力)
酵母浸出粉 5.0g 水 1000ml
除琼脂外，取上述成分，混合，加热煮沸使溶解，并不断搅拌。如需要，调节pH 使灭菌后在25℃的pH 值为7.3±0.2，加入琼脂，加热溶化，分装，灭菌。如有必要，灭菌后，冷至45～50℃加入相当于20mg 庆大霉素的无菌硫酸庆大霉素，混匀，倾注平皿。
19.珠菌显色培养基
胨 10.2g 琼脂 15g
氢罂素 0.5g 水 1000ml
色素 22.0g
除琼脂外,取上述成分,混合,微温溶解,调节pH 值使加热后在25℃的pH 为6.3±0.2。滤过，加入琼脂，加热煮沸，不断搅拌至琼脂完全溶解，倾注平皿。
以上是由小编分享的2016版药典微生物检验的学习与实施全部内容，希望对你的考试有帮助。
2016版药典微生物检验的学习与实施：
宏观变化一：全面与国际接轨
以无菌检查法为例
从上述无菌检查法的比较中我们不难看出，新药典参考EP7.0、USP35、JPXV标准，修订中国药典的微生物标准;参考欧美日药典标准修订菌数标准表达方式;以需氧菌总数替代细菌数、耐胆盐的格兰阴性菌替代大肠菌群等等，并增加新的概念：如含菌量较低的供试品细菌总数测定使用最大可能数法、分散均匀并非一定要溶解等等，同时新药典引入的偏差调查概念和内容更具体等等方面说明，微生物检验技术与国际标准要求接轨已成定势。
微观变化二：实验环境的修订
2015年版药典中对无菌检查环境洁净度规定：无菌检查应在B 级背景下的A 级单向流洁净区域或D级背景下的隔离器中进行。限度检查要求在受控洁净环境下的局部不低于B级单向流空气区域进行。
环境的提升，除了设备硬件的要求提高，还有验证和维持环境要求的提高。洁净或无菌室应配备独立的空气机组或空气净化系统，以满足相应的检验要求，包括温度和湿度的控制，压力、照度和噪声等都应符合工作要求。空气过滤系统应定期维护和更换, 并保存相关记录。
微生物实验室应划分成相应的洁净区域和活菌操作区域，同时应根据实验目的，在时间或空间上有效分隔不相容的实验活动，将交叉污染的风险降低到最低。活菌操作区应该配备生物安全柜，以避免危害性的生物因子对实验人员和实验环境造成的危害。
实验室环境监测要求提高，增加人员进出表面微生物的监测，以降低人员操作时带来的风险。对微生物室使用的消毒剂和清洁剂进行验证，从而有效控制微生物，保证无菌环境达到要求。
微生物实验室需要加强人员在环境监测时的操作规范，保证环境监测数据的准确性。而且实验人员应经过实验室生物安全方面的培训，保证自身安全，防止微生物在实验室内部污染。
微观变化三：培养系统的修订
例如下表：
计数用培养基的修订
控制菌所用培养基的修订
微生物限度方法适用性试验中的修订
从上述表格比较不难看出：培养基系统的修订提升了培养基的灵敏度及微生物的检出率，对培养基的质量控制和人员的检验操作要求均提高。实验室应对培养基的适用性、灭菌方法、菌株纯度和活性(包括性能)、试剂的质量等进行监控。用于环境监控的培养基须特别防护，以防止外来的污染物带到环境中及避免出现假阳性结果。试验菌株的质量保证和基本操作技术均有待提高，包括菌悬液的配制、菌种的鉴定、表型描述、革兰染色、重要生化试验等。
微观变化四：药典整合后编制的新通则
2015版《中国药典》通则9201—药品微生物检验替代方法验证指导原则
2015版《中国药典》通则9203——药品微生物实验室质量管理指导原则
2015版《中国药典》通则9205——药品洁净实验室微生物监测和控制指导原则
2015版《中国药典》通则9206——无菌检查用隔离系统验证指导原则
与2016版药典微生物检验的学习与实施有关的阅读：
控制菌检查法
控制菌检查法系用于在规定的试验条件下，检查供试品中是否存在特定的微生物。
当本法用于检查非无菌制剂及其原、辅料等是否符合相应的微生物限度标准时，应按下列规定进行检验，包括样品取样量和结果判断等。
供试品检出控制菌或其他致病菌时,按一次检出结果为准,不再复试。
供试液制备及实验环境要求同“非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法”。
如果供试品具有抗菌活性，应尽可能去除或中和。供试品检查时, 若使用了中和剂或灭活剂，应确认有效性及对微生物无毒性。
供试液制备时如果使用了表面活性剂，应确认其对微生物无毒性以及与所使用中和剂或灭活剂的相容性。
培养基适用性检查和控制菌检查方法适用性试验
供试品控制菌检查中所使用的培养基应进行适用性检查。
供试品的控制菌检查方法应进行方法适用性试验，以确认所采用的方法适合于该产品的控制菌检查。
若检验程序或产品发生变化可能影响检验结果时，控制菌检查方法应重新进行适用性试验。
菌种及菌液制备
菌种 试验用菌株的传代次数不得超过5 代(从菌种保藏中心获得的干燥菌种为第0 代)，并采用适宜的菌种保藏技术进行保存，以保证试验菌株的生物学特性。
金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)〔CMCC(B)26 003〕
铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa)〔CMCC(B)10 104〕
大肠埃希菌(Escherichia coli)〔CMCC(B)44 102〕
乙型副伤寒沙门菌(Salmonella paratyphi B)〔CMCC(B)50 094〕
白色念珠菌(Candida albicans)〔CMCC(F)98 001〕
生孢梭菌(Clostridium sporogenes)〔CMCC(B)64 941〕
菌液制备 将金黄色葡萄球菌、铜绿假单胞菌、大肠埃希菌、沙门菌分别接种于胰酪大豆胨液体培养基中或在胰酪大豆胨琼脂培养基上，30～35℃培养18～24 小时;将白色念珠菌接种于沙氏葡萄糖琼脂培养基上或沙氏葡萄糖液体培养基中，20～25℃培养2～3 天;将生孢梭菌接种于梭菌增菌培养基中置厌氧条件下30～35℃培养24～48 小时或接种于硫乙醇酸盐流体培养基中30～35℃培养18～24 小时。上述培养物用pH7.0 无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液或0.9%无菌氯化钠溶液制成适宜浓度的菌悬液。
菌液制备后若在室温下放置，应在2 小时内使用;若保存在2～8℃，可在24 小时内使用。生孢梭菌孢子悬液可替代新鲜的菌悬液，孢子悬液可保存在2～8℃，在验证过的贮存期内使用。
阴性对照
为确认试验条件是否符合要求，应进行阴性对照试验， 阴性对照试验应无菌生长。如阴性对照有菌生长，应进行偏差调查。
培养基适用性检查
控制菌检查用的成品培养基、由脱水培养基或按处方配制的培养基均应进行培养基的适用性检查。
控制菌检查用培养基的适用性检查项目包括促生长能力、抑制能力及指示特性的检查。各培养基的检查项目及所用的菌株见表1。
表1 控制菌检查用培养基的促生长能力、抑制能力和指示特性
| 控制菌检查 | 培养基 | 特性 | 试验菌株 |
| 耐胆盐革兰阴性菌 | 肠道菌增菌液体培养基 | 促生长能力 | 大肠埃希菌、铜绿假单胞菌 |
| 抑制能力 | 金黄色葡萄球菌 | ||
| 紫红胆盐葡萄糖琼脂培养基 | 促生长能力+指示特性 | 大肠埃希菌、铜绿假单胞菌 | |
| 大肠埃希菌 | 麦康凯液体培养基 | 促生长能力 | 大肠埃希菌 |
| 抑制能力 | 金黄色葡萄球菌 | ||
| 麦康凯琼脂培养基 | 促生长能力+指示特性 | 大肠埃希菌 | |
| 沙门菌 | RV 沙门菌增菌液体培养基 | 促生长能力 | 乙型副伤寒沙门菌 |
| 抑制能力 | 金黄色葡萄球菌 | ||
| 木糖赖氨酸脱氧胆酸盐琼脂培养基 | 促生长能力+指示特性 | 乙型副伤寒沙门菌 | |
| 三糖铁琼脂培养基 | 指示能力 | 乙型副伤寒沙门菌 | |
| 铜绿假单胞菌 | 溴化十六烷基三甲铵琼脂培养基 | 促生长能力 | 铜绿假单胞菌 |
| 抑制能力 | 大肠埃希菌 | ||
| 金黄色葡萄球菌 | 甘露醇氯化钠琼脂培养基 | 促生长能力+指示特性 | 金黄色葡萄球菌 |
| 抑制能力 | 大肠埃希菌 | ||
| 梭菌 | 梭菌增菌培养基 | 促生长能力 | 生孢梭菌 |
| 哥伦比亚琼脂培养基 | 促生长能力 | 生孢梭菌 | |
| 白色念珠菌 | 沙氏葡萄糖琼脂培养基 | 促生长能力 | 白色念珠菌 |
| 沙氏葡萄糖琼脂培养基 | 促生长能力+指示特性 | 白色念珠菌 | |
| 念珠菌显色培养基 | 促生长能力+指示能力 | 白色念珠菌 | |
| 抑制能力 | 大肠埃希菌 |
固体培养基促生长能力检查 用涂布法分别接种不大于100cfu 的试验菌(见表1)于被检培养基和对照培养基平板上，在相应控制菌检查规定的培养温度及不大于规定的最短培养时间下培养，被检培养基与对照培养基上生长的菌落大小、形态特征应一致。
培养基抑制能力检查 接种不少于100cfu 的试验菌(见表1)于被检培养基和对照培养基中，在相应控制菌检查规定的培养温度及不小于规定的最长培养时间下培养，试验菌应不得生长。
培养基指示特性检查 用涂布法分别接种不大于100cfu 的试验菌(见表1)于被检培养基和对照培养基平板上，在相应控制菌检查规定的培养温度及不大于规定的最短培养时间下培养，被检培养基上试验菌生长的菌落大小、形态特征、指示剂反应情况等应与对照培养基一致。
控制菌检查方法适用性试验
供试液制备 按下列“供试品检查”中的规定制备供试液。
试验菌 根据各品种项下微生物限度标准中规定检查的控制菌选择相应试验菌株，确认耐胆盐革兰阴性菌检查方法时,采用大肠埃希菌和铜绿假单胞菌为试验菌。
适用性试验 按控制菌检查法取规定量供试液及不大于100cfu 的试验菌接入规定的培养基中;采用薄膜过滤法时,取规定量供试液,过滤,冲洗,在最后一次冲洗液中加入试验菌,过滤后,注入规定的培养基或取出滤膜接入规定的培养基中。依相应的控制菌检查方法，在规定的温度和最短时间下培养，应能检出所加
试验菌相应的反应特征。
结果判断 上述试验若检出试验菌，按此供试液制备法和控制菌检查方法进行供试品检查;若未检出试验菌，应消除供试品的抑菌活性[见非无菌产品微生物检查：微生物计数法中的“抗菌活性的去除或灭活”]，并重新进行方法适用性试验。
如果经过试验确证供试品对试验菌的抗菌作用无法消除，可认为受抑制的微生物不易存在于该供试品中，选择抑菌成份消除相对彻底的方法进行供试品的检查。
供试品检查
供试品的控制菌检查应按经方法适用性试验确认的方法进行。
阳性对照试验 阳性对照试验方法同供试品的控制菌检查,对照菌的加量应不大于100cfu。阳性对照试验应检出相应的控制菌。
阴性对照试验 以稀释剂代替供试液照相应控制菌检查法检查，阴性对照试验应无菌生长。如果阴性对照有菌生长，应进行偏差调查。
耐胆盐革兰阴性菌(Bile-Tolerant Gram-Negative Bacteria)
供试液制备和预培养 取供试品，用胰酪大豆胨液体培养基作为稀释剂照“非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法”制成1：10 供试液，混匀，在20～25℃培养，培养时间应使供试品中的细菌充分恢复但不增殖(约2小时)。
定性试验
除另有规定外，取相当于1g 或1mL 供试品的上述预培养物接种至适宜体积(经方法适用性试验确定)肠道菌增菌液体培养基中，30～35℃培养24～48 小时后，划线接种于紫红胆盐葡萄糖琼脂培养基平板上，30～35℃培养18～24 小时。如果平板上无菌落生长，判供试品未检出耐胆盐革兰阴性菌。
定量试验
选择和分离培养 取相当于0.1g、0.01g 和0.001g(或0.1mL、0.01mL 和0.001mL)供试品的预培养物或其稀释液分别接种至适宜体积(经方法适用性试验确定)肠道菌增菌液体培养基中，30～35℃培养24～48 小时。上述每一培养物分别划线接种于紫红胆盐葡萄糖琼脂培养基平板上，30～35℃培养18～24 小时。
结果判断 若紫红胆盐葡萄糖琼脂培养基平板上有菌落生长，则对应培养管为阳性，否则为阴性。根据各培养管检查结果，从表2 查1g 或1ml 供试品中含有耐胆盐革兰阴性菌的可能菌数。
表2 耐胆盐革兰阴性菌的可能菌数(N)
| 各供试品量的检查结果 | 每1g(或1mL)供试品中可能的菌数cfu | ||
| 0.1g 或0.1ml | 0.01g 或0.01ml | 0.001g 或0.001ml | |
| + | + | + | N＞103 |
| + | + | - | 102＜N＜103 |
| + | - | - | 10＜N＜102 |
| - | - | - | N＜10 |
⑵ 若供试品量减少10 倍(如0.01g 或0.01ml，0.001g 或0.001ml，0.0001g 或0.0001ml)，则每1g(或1mL)供试品中可能的菌数(N)应相应增加10 倍。
大肠埃希菌(Escherichia coli)
供试液制备和增菌培养 取供试品，照“非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法”制成1：10 供试液。取相当于1g 或1mL 供试品的供试液，接种至适宜体积(经方法适用性试验确定)的胰酪大豆胨液体培养基中，混匀，30～35℃培养18～24 小时。
选择和分离培养 取上述培养物1mL 接种至100mL 麦康凯液体培养基中，42～44℃培养24～48 小时。取麦康凯液体培养物划线接种于麦康凯琼脂培养基平板上，30～35℃培养18～72 小时。
结果判断 若麦康凯琼脂培养基平板上有菌落生长，应进行分离、纯化及适宜的鉴定试验, 确证是否为大肠埃希菌;若麦康凯琼脂培养基平板上没有菌落生长，或虽有菌落生长但鉴定结果为阴性，判供试品未检出大肠埃希菌。
沙门菌(Salmonella)
供试液制备和增菌培养 取10g 或10mL 供试品直接或处理后接种至适宜体积(经方法适用性试验确定)的胰酪大豆胨液体培养基中，混匀，30～35℃培养18～24 小时。
选择和分离培养 取上述培养物0.1mL 接种至10mL RV 沙门增菌液体培养基中，30～35℃培养18～24 小时。取少量RV 沙门菌增菌液体培养物划线接种于木糖赖氨酸脱氧胆酸盐琼脂培养基平板上，30～35℃培养18～48 小时。
沙门菌在木糖赖氨酸脱氧胆酸盐琼脂培养基平板上生长良好，菌落为淡红色或无色、透明或半透明、中心有或无黑色。用接种针挑选疑似菌落于三糖铁琼脂培养基高层斜面上进行斜面和高层穿刺接种，培养18～24 小时，或采用其它适宜方法进一步鉴定。
结果判断 若木糖赖氨酸脱氧胆酸盐琼脂培养基平板上有疑似菌落生长，且三糖铁琼脂培养基的斜面为红色、底层为黄色，或斜面黄色、底层黄色或黑色，应进一步进行适宜的鉴定试验, 确证是否为沙门菌。如果平板上没有菌落生长，或虽有菌落生长但鉴定结果为阴性，或三糖铁琼脂培养基的斜面未见红色、底层未见黄色;或斜面黄色、底层未见黄色或黑色，判供试品未检出沙门菌。
铜绿假单胞菌(Pseudomonas aeruginosa)
供试液制备和增菌培养 取供试品，照“非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法”制成1：10 供试液。取相当于1g 或1mL 供试品的供试液，接种至适宜体积(经方法适用性试验确定的)的胰酪大豆胨液体培养基中，混匀。30～35℃培养18～24 小时。
选择和分离培养 取上述培养物划线接种于溴化十六烷基三甲铵琼脂培养基平板上，30～35℃培养18～72 小时。取上述平板上生长的菌落进行氧化酶试验，或采用其它适宜方法进一步鉴定。
氧化酶试验 将洁净滤纸片置于平皿内,用无菌玻棒取上述平板上生长的菌落涂于滤纸片上，滴加新配制的1%二盐酸N, N -二甲基对苯二胺试液，在30 秒内若培养物呈粉红色并逐渐变为紫红色为氧化酶试验阳性,否则为阴性。
结果判断 若溴化十六烷基三甲铵琼脂培养基平板上有菌落生长，且氧化酶试验阳性，应进一步进行适宜的鉴定试验, 确证是否为铜绿假单胞菌。如果平板上没有菌落生长，或虽有菌落生长但鉴定结果为阴性，或氧化酶试验阴性，判供试品未检出铜绿假单胞菌。
金黄色葡萄球菌(Staphylococcus aureus)
供试液制备和增菌培养 取供试品，照“非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法”制成1：10 供试液。取相当于1g 或1mL 供试品的供试液，接种至适宜体积(经方法适用性试验确定)的胰酪大豆胨液体培养基中，混匀。30～35℃培养18～24 小时。
选择和分离培养 取上述培养物划线接种于甘露醇氯化钠琼脂培养基平板上，30～35℃培养18～72 小时。
结果判断 若甘露醇氯化钠琼脂培养基平板上有黄色菌落或外周有黄色环的白色菌落生长，应进行分离、纯化及适宜的鉴定试验, 确证是否为金黄色葡萄球菌;若平板上没有与上述形态特征相符或疑似的菌落生长，或虽有相符或疑似的菌落生长但鉴定结果为阴性，判供试品未检出金黄色葡萄球菌。
梭菌(Clostridia)
供试液制备和热处理 取供试品，照“非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法”制成1：10 供试液。取相当于1g 或1mL 供试品的供试液2 份，其中1 份置80℃保温10 分钟后迅速冷却。
增菌、选择和分离培养 将上述2 份供试液分别接种至适宜体积(经方法适用性试验确定)的梭菌增菌培养基中，置厌氧条件下30～35℃培养48 小时。取上述每一培养物少量，分别涂抹接种于哥伦比亚琼脂培养基平板上，置厌氧条件下30～35℃培养48～72 小时。
过氧化氢酶试验 取上述平板上生长的菌落，置洁净玻片上，滴加3%过氧化氢试液，若菌落表面有气泡产生,为过氧化氢酶试验阳性,否则为阴性。
结果判断 若哥伦比亚琼脂培养基平板上有厌氧杆菌生长(有或无芽孢)，且过氧化氢酶反应阴性的，应进一步进行适宜的鉴定试验, 确证是否为梭菌;如果哥伦比亚琼脂培养基平板上没有厌氧杆菌生长，或虽有相符或疑似的菌落生长但鉴定结果为阴性，或过氧化氢酶反应阳性，判供试品未检出梭菌。
白色念珠菌(Candida albicans)
供试液制备和增菌培养 取供试品，照“非无菌产品微生物限度检查：微生物计数法”制成1：10 供试液。取相当于1g 或1mL 供试品的供试液，接种至适宜体积(经方法适用性试验确定)的沙氏葡萄糖液体培养基中，混匀，30～35℃培养3～5 天。
选择和分离 取上述预培养物划线接种于沙氏葡萄糖琼脂培养基平板上，30～35℃培养24～48 小时。
白色念珠菌在沙氏葡萄糖琼脂培养基上生长的菌落呈乳白色，偶见淡黄色,表面光滑有浓酵母气味,培养时间稍久则菌落增大，颜色变深、质地变硬或有皱褶。挑取疑似菌落接种至念珠菌显色培养基平板上，培养24～48 小时(必要时延长至72 小时)，或采用其它适宜方法进一步鉴定。
结果判断 若沙氏葡萄糖琼脂培养基平板上有疑似菌落生长，且疑似菌在念珠菌显色培养基平板上生长的菌落呈阳性反应，应进一步进行适宜的鉴定试验,确证是否为白色念珠菌;若沙氏葡萄糖琼脂培养基平板上没有菌落生长，或虽有菌落生长但鉴定结果为阴性，或疑似菌在念珠菌显色培养基平板上生长的菌落呈阴性反应，判供试品未检出白色念珠菌。
稀释液
稀释液配制后,应采用验证合格的灭菌程序灭菌。
1. pH7.0 无菌氯化钠-蛋白胨缓冲液 取磷酸二氢钾3.56g，无水磷酸氢二钠5.77g，氯化钠4.30g，蛋白胨1.00g，加水1000ml，微温溶解，滤清，分装，灭菌。
2. pH6.8 无菌磷酸盐缓冲液、pH7.2 无菌磷酸盐缓冲液 、pH7.6 无菌磷酸盐缓冲液按缓冲液 照缓冲液配制后,过滤,分装,灭菌。
如需要,可在上述稀释液灭菌前或灭菌后加入表面活性剂或中和剂等。
3.0.9%无菌氯化钠溶液 取氯化钠9.0g,加水溶解使成1000ml，过滤，分装，灭菌。
培养基及其制备方法
培养基可按以下处方制备,也可使用按该处方生产的符合要求的脱水培养基。配制后,应按验证过的高压灭菌程序灭菌。
1.胰酪大豆胨液体培养基(TSB)
胰酪胨 17.0g 氯化钠 5.0g
大豆木瓜蛋白酶水解物 3.0g 磷酸氢二钾 2.5g
葡萄糖/无水葡萄糖2.5g/2.3g 水 1000ml
除葡萄糖外，取上述成分，混合，微温溶解，滤过，调节pH 使灭菌后在25℃的pH 值为7.3±0.2，加入葡萄糖，分装，灭菌。
2. 胰酪大豆胨琼脂培养基(TSA)
胰酪胨 15.0g 琼脂 15.0g
大豆木瓜蛋白酶水解物 5.0g 水 1000ml
氯化钠 5.0g
除琼脂外，取上述成分，混合，微温溶解，调节pH 使灭菌后在25℃的pH 值为7.3±0.2，加入琼脂，加热熔化后，摇匀，分装，灭菌。
3. 沙氏葡萄糖液体培养基(SDB)
动物组织胃蛋白酶水解物和胰酪胨等量混合物 10.0g
葡萄糖 20.0g 水 1000ml
除葡萄糖外，取上述成分，混合，微温溶解，调节pH 使灭菌后在25℃的pH 值为5.6±0.2，加入葡萄糖，摇匀，分装，灭菌。
4.沙氏葡萄糖琼脂培养基(SDA)
动物组织胃蛋白酶水解物和胰酪胨等量混合物 10.0g
葡萄糖 40.0g 水 1000ml
琼脂 15.0g
除葡萄糖、琼脂外，取上述成分，混合，微温溶解，调节pH 使灭菌后在25℃的pH 值为5.6±0.2，加入琼脂，加热熔化后，再加入葡萄糖，摇匀，分装，灭菌。
如使用含抗生素的沙氏葡萄糖琼脂培养基，应确认培养基中所加的抗生素量不影响供试品中霉菌和酵母菌的生长。
5.马铃薯葡萄糖琼脂培养基(PDA)
马铃薯(去皮) 200g 琼脂 14.0g
葡萄糖 20.0g 水 1000ml
取马铃薯，切成小块，加水1000mL，煮沸20-30min，用6-8 层纱布过滤，取滤液补水至1000ml，调节pH 使灭菌后在25℃的pH 值为5.6±0.2，加入琼脂,加热溶化后, 再加入葡萄糖，摇匀，分装，灭菌。
6.玫瑰红钠琼脂培养基
胨 5.0g 玫瑰红钠 0.0133g
葡萄糖 10.0g 琼脂 14.0g
磷酸二氢钾 1.0g 水 1000ml
硫酸镁 0.5g
除葡萄糖、玫瑰红钠外,取上述成分,混合,微温溶解，加入葡萄糖、玫瑰红钠,摇匀，分装，灭菌。
7.硫乙醇酸盐流体培养基
胰酪胨 15.0g 氯化钠 2.5g
酵母浸出粉 5.0g 琼脂 0.75g
无水葡萄糖 5.0g 水 1000 ml
L-胱氨酸 0.5g
新配制的0.1%刃天青溶液 1.0 ml
硫乙醇酸钠(或硫乙醇酸) 0.5g(0.3 ml)
除葡萄糖和刃天青溶液外,取上述成分,混合,微温溶解，调节pH为弱碱性，煮沸，滤清，加入葡萄糖和刃天青溶液,摇匀，调节pH，使灭菌后在25℃的pH 值为7.1±0.2。分装至适宜的容器中，其装量与容器高度的比例应符合培养结束后培养基氧化层(粉红色)不超过培养基深度的1/2。灭菌。在供试品接种前，培养基氧化层的高度不得超过培养基深度的1/5，否则，须经100℃水浴加热至粉红色消失(不超过20分钟)，迅速冷却，只限加热一次，并防止被污染。
8.肠道菌增菌液体培养基
明胶胰酶水解物 10.0g 二水合磷酸氢二钠 8.0g
牛胆盐 20.0g 亮绿 15mg
葡萄糖 5.0g 水 1000ml
磷酸二氢钾 2.0g
除葡萄糖、亮绿外,取上述成分,混合,微温溶解，调节pH 使加热后在25℃的pH 值为7.2±0.2，加入葡萄糖、亮绿，加热至100℃ 30 分钟，立即冷却。
9.紫红胆盐葡萄糖琼脂培养基
酵母浸出粉 3.0g 中性红 30mg
明胶胰酶水解物 7.0g 结晶紫 2mg
脱氧胆酸钠 1.5g 琼脂 15.0g
葡萄糖 10.0g 水 1000ml
氯化钠 5.0g
除葡萄糖、中性红、结晶紫、琼脂外,取上述成分,混合,微温溶解，调节pH使加热后在25℃的pH 值为7.4±0.2。加入葡萄糖、中性红、结晶紫、琼脂，加热煮沸(不能在高压灭菌器中加热)。
10.麦康凯液体培养基
明胶胰酶水解物 20.0g 溴甲酚紫 10mg
乳糖 10.0g 水 1000ml
牛胆盐 5.0g
除乳糖、溴甲酚紫外，取上述成分，混合，微温溶解，调节pH 使灭菌后在25℃的pH 值为7.3±0.2，加入乳糖、溴甲酚紫，分装，灭菌。
11.麦康凯琼脂培养基
明胶胰酶水解物 17.0g 中性红 30.0mg
胨 3.0g 结晶紫 1mg
乳糖 10.0g 琼脂 13.5g
脱氧胆酸钠 1.5g 水 1000ml
氯化钠 5.0g
除乳糖、中性红、结晶紫、琼脂外，取上述成分，混合，微温溶解，调节pH使灭菌后在25℃的pH 值为7.1±0.2，加入乳糖、中性红、结晶紫、琼脂，加热煮沸1 分钟，并不断振摇，分装，灭菌。
12.RV 沙门菌增菌液体培养基
大豆胨 4.5g 六水合氯化镁 29.0g
氯化钠 8.0g 孔雀绿 36mg
磷酸氢二钾 0.4g 水 1000ml
磷酸二氢钾 0.6g
除孔雀绿外，取上述成分，混合，微温溶解，调节pH 使灭菌后在25℃的pH值为5.2±0.2。加入孔雀绿，分装，灭菌,灭菌温度不能超过115℃。
13.木糖赖氨酸脱氧胆酸盐琼脂培养基
酵母浸出粉 3.0g 氯化钠 5.0g
L-赖氨酸 5.0g 硫代硫酸钠 6.8g
木糖 3.5g 枸橼酸铁铵 0.8g
乳糖 7.5g 酚红 80mg
蔗糖 7.5g 琼脂 13.5g
脱氧胆酸钠 2.5g 水 1000ml
除三种糖、酚红、琼脂外，取上述成分，混合，微温溶解,调节pH 使加热后在25℃的pH 值为7.4±0.2，加入三种糖、酚红、琼脂，加热至沸腾，冷至50℃倾注平皿(不能在高压灭菌器中加热)。
14.三糖铁琼脂培养基(TSI)
胨 20.0g 硫酸亚铁 0.2g
牛肉浸出粉 5.0g 硫代硫酸钠 0.2g
乳糖 10.0g 0.2%酚磺酞指示液 12.5ml
蔗糖 10.0g 琼脂 12.0g
葡萄糖 1.0g 水 1000ml
氯化钠 5.0g
除三种糖、0.2%酚磺酞指示液、琼脂外，取上述成分，混合，微温溶解, 调节pH 使灭菌后在25℃的pH 值为7.3±0.1，加入琼脂，加热溶化后，再加入其余各成分，摇匀，分装，灭菌，制成高底层(2～3cm)短斜面。
15.溴化十六烷基三甲铵琼脂培养基
明胶胰酶水解物 20.0g 甘油 10ml
氯化镁 1.4g 溴化十六烷基三甲铵 0.3g
硫酸钾 10.0g 琼脂 13.6g
水 1000ml
除琼脂外，取上述成分，混合，微温溶解，调节pH 使灭菌后在25℃的pH 值为7.4±0.2，加入琼脂，加热煮沸1 分钟，分装，灭菌。
16.甘露醇氯化钠琼脂培养基
胰酪胨 5.0g 氯化钠 75.0g
动物组织胃蛋白酶水解物 5.0g 酚红 25mg
牛肉浸出粉 1.0g 琼脂 15.0g
D-甘露醇 10.0g 水 1000ml
除甘露醇、酚红、琼脂外，取上述成分，混合，微温溶解，调节pH 使灭菌后在25℃的pH 值为7.4±0.2，加热并振摇，加入甘露醇、酚红、琼脂，煮沸1分钟，分装，灭菌。
17.梭菌增菌培养基
胨 10.0g 盐酸半胱氨酸 0.5g
牛肉浸出粉 10.0g 乙酸钠 3.0g
酵母浸出粉 3.0g 氯化钠 5.0g
可溶性淀粉 1.0g 琼脂 0.5g
葡萄糖 5.0g 水 1000ml
除葡萄糖外，取上述成分，混合，加热煮沸使溶解，并不断搅拌。如需要，调节pH 使灭菌后在25℃的pH 值为6.8±0.2。加入葡萄糖，混匀，分装，灭菌。
18.哥伦比亚琼脂培养基
胰酪胨 10.0g 玉米淀粉 1.0g
肉胃蛋白酶水解物 5.0g 氯化钠 5.0g
心胰酶水解物 3.0g 琼脂 10.0～15.0g(依凝固力)
酵母浸出粉 5.0g 水 1000ml
除琼脂外，取上述成分，混合，加热煮沸使溶解，并不断搅拌。如需要，调节pH 使灭菌后在25℃的pH 值为7.3±0.2，加入琼脂，加热溶化，分装，灭菌。如有必要，灭菌后，冷至45～50℃加入相当于20mg 庆大霉素的无菌硫酸庆大霉素，混匀，倾注平皿。
19.珠菌显色培养基
胨 10.2g 琼脂 15g
氢罂素 0.5g 水 1000ml
色素 22.0g
除琼脂外,取上述成分,混合,微温溶解,调节pH 值使加热后在25℃的pH 为6.3±0.2。滤过，加入琼脂，加热煮沸，不断搅拌至琼脂完全溶解，倾注平皿。
以上是由小编分享的2016版药典微生物检验的学习与实施全部内容，希望对你的考试有帮助。